LOGIN TO YOUR ACCOUNT

Username
Password
Remember Me
Or use your Academic/Social account:

CREATE AN ACCOUNT

Or use your Academic/Social account:

Congratulations!

You have just completed your registration at OpenAire.

Before you can login to the site, you will need to activate your account. An e-mail will be sent to you with the proper instructions.

Important!

Please note that this site is currently undergoing Beta testing.
Any new content you create is not guaranteed to be present to the final version of the site upon release.

Thank you for your patience,
OpenAire Dev Team.

Close This Message

CREATE AN ACCOUNT

Name:
Username:
Password:
Verify Password:
E-mail:
Verify E-mail:
*All Fields Are Required.
Please Verify You Are Human:
fbtwitterlinkedinvimeoflicker grey 14rssslideshare1
Publisher: Altai State University, Biological Faculty
Journal: Acta Biologica Sibirica
Languages: English
Types: Article
Subjects: Биология; Экология; Ботаника; Генетика растений; Биотехнология, Biology; Ecology; Botany; Plant Genetics; Biotechnology, spring wheat; immature embryo; donor plant; genotype; growing conditions; callus; morphogenesis; plant regeneration; variation., яровая пшеница; незрелый зародыш; растение-донор; генотип; условия выращивания; каллус; морфогенез; регенерация растений; изменчивость.
В статье рассмотрено влияние условий выращивания донорных растений на морфогенетические процессы в культуре незрелых зародышей яровой мягкой пшеницы. Материалом исследования служили 12 сортов различного эколого-географического происхождения из коллекции Алтайского НИИ сельского хозяйства (Барнаул, Россия). Донорные растения выращивали в теплице и в условиях полевой вегетации. В качестве эксплантов использованы незрелые зародыши размером 1,3–1,5 мм, изолированные на 14–16 день после опыления исходных растений. Зародыши выращивали на питательной среде Линсмайера-Скуга (LS), содержащей 0,8% агара, 3% сахарозы, 2,0 мг/л дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д), в темноте при температуре 26±1 °C. Через 25–30 дней каллусы переносили на дифференцирующую среду LS, дополненную 0,5 мг/л 2,4-Д и 0,5 мг/л кинетина и выращивали на свету с 16-часовом фотопериодом (день) и температуре 25±1°C. Морфогенные каллусы переносили на среду для регенерации, содержащую 0,2 мг/л индолил-3-уксусной кислоты (ИУК). Эксперимент выполнен в четырех повторениях по 60 эксплантов на генотип. Установлено, что генетический фактор является ведущим на всех стадиях культуры ткани с максимальным эффектом на этапе регенерации (80%). Доля фактора «взаимодействие генотип-условия» была примерно одинакова с генотипическим влиянием на этапах морфогенеза (27%) и каллусогенеза (28%). Влияние фактора «условия» было статистически значимо, но уступало остальным рассмотренным источникам варьирования культуральных признаков. Максимальный эффект условий выращивания доноров эксплантов был установлен при индукции морфогенного каллуса. Полевая вегетация оказалась наиболее благоприятна для генотипов с высокой каллусогенной и регенерационной способностью. Генотипы с низким регенерационным потенциалом повышали изученные признаки в 3,4–13,9 раз при выращивании растений – доноров эксплантов в условиях теплицы. Для большинства изученных сортов умеренные температура и количество осадков в период, предшествующий отбору материала, а также естественное освещение способствовали повышению морфогенной компетенции эксплантов после их введения в культуру. В статье обсуждаются возможные причины влияния условий выращивания материнских растений на эффективность каллусо-, морфогенеза и регенерации в культуре ткани пшеницы in vitro.
  • The results below are discovered through our pilot algorithms. Let us know how we are doing!

    • 72 Acta Biologica Sibirica Dodig, D., Zorić, M., Mitić, N., Nikolić, R., King, S.R., Lalević, B., Šurlan-Momirović, G. (2010). Morphogenetic responses of embryo culture of wheat related to environment culture conditions of the explant donor plant. Sci. Agric. (Piracicaba, Braz.), 67(3), 295-300.
    • Food and Agriculture Organization (2011). Global cereal supply and demand brief. Crop Prospects and Food Situation, 1, 4-5.
    • Grigorieva, L.P., Shletser, I.A. Screening wheat caltivars for morphogenesis ability in immature embryo culture in vitro. (2006). Izvestiya altajskogo gosudarstvennogo universiteta, 3, 64-66 (in Russian).
    • Han, X.F., Tao, L.L., Yin, G.X., Liu, X.L., Du, L.P., Wei, Y.Q., Yan, Y.M., Ye, X.G. (2010). Effect of genotype and growing environment on anther culture in wheat. Acata Agronomica Sinica, 36, 1209- 1215.
    • Hess, J.R., Carman, J.G. (1998). Embryogenic competence of immature wheat embryos: genotype, donor plant environment and endogenous hormone levels. Crop Science, 38, 249-253.
    • Jones, H.D. (2005). Wheat transformation: current technology and applications to grain development and composition. J. Cereal Sci, 41, 137-147.
    • Kruglova, N.N., Katasonova, A.A.(2009). Immature wheat embryo as the morphogenetically competent explant. Fiziologiya i bioximiya kulturnyh rastenij, 41(2), 124-131 (in Russian).
    • Linsmaier, E., Skoog, F. (1965). Organic growth factor reqularments of tobacco tissue culture. Physiol. Plant, 18(1), 100-127.
    • Maddock, S.E., Lancaster, V.A., Risiott, R., Franklin, J. (1983). Plant regeneration from cultured immature embryos and inflorescences of 25 cultivars of wheat (T. aestivum). J. Exp. Bot, 34(144), 915-926.
    • Mamrutha, H.M., Kumar, R., Venkatesh, K., Sharma, P., Kumar, R., Tiwari, V., Sharma, I. (2014). Genetic transformation of wheat - Present status and future potential. Journal of Wheat Research, 6(2), 107- 119.
    • Mitić N., Dodig, D., Nikolić R. (2006). Variability of in vitro culture response in wheat genotypes, genotype and environmental effects. Genetika, 38(3), 183-192.
    • Mokhtari, A., Alizadeh, H., Samadi, B.Ya., Omidi, M., Otroshy, M., Moeini, Z. (2013). Effect of plant growth regulators on direct shoot regeneration of wheat immature embryonic explants. Journal of Agricultural Engineering and Biotechnology, 1(3), 74-80.
    • Nasircilar, A.G., Turgut, K., Fiscin, K. (2006). Callus induction and plant regeneration from mature embryos of different wheat genotypes. Pak. J. Bot, 38(2), 637-645.
    • Nikitina, E.D., Khlebova, L.P., Sokolova, G.G. (2013a). The development of Ni-resistance sources of spring wheat by cell selection in vitro. Izvestiya altajskogo gosudarstvennogo universiteta, 3-1(79), 88-90 (in Russian).
    • Nikitina, E.D., Khlebova, L.P., Sokolova, G.G., Ereschenko, O.V. (2013b). The development of stressresistant stock of spring bread wheat by in vitro cell selection. Izvestiya altajskogo gosudarstvennogo universiteta, 3-2(79), 95-98. (in Russian). DOI: 10.14258/izvasu(2013)3.2-20.
    • Nikitina, E.D., Khlebova, L.P. (2014). The influence of temperature and light on direct sprouting of Triticum aestivum L. immature embryos in vitro. Izvestiya altajskogo gosudarstvennogo universiteta, 3-1(83), 46-50 (in Russian).
    • Nikitina, E.D., Khlebova, L.P., Ereschenko, O.V. (2014). The development of some technology elements of the spring wheat cell selection for resistance to abiotic stresses. Izvestiya altajskogo gosudarstvennogo universiteta, 3-2(83), 50-54 (in Russian). DOI: 10.14258/izvasu(2014)3.2-09.
    • Nikitina, E.D., Khlebova, L.P., Pronina, R.D. (2015). In vitro somaclonal variation as initial material for bread wheat breeding. Acta Biologica Sibirica, 1(3-4), 171-186 (in Russian).
    • Patnaik, D., Khurana, P. (2001). Wheat biotechnology: A minireview. Electronic Journal of Biotechnology, 4(2), 1-29.
    • Pellegrineschi, A., Brito, R.M., McLean, S., Hoisington, D. (2004). Effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and NaCl on the establishment of callus and plant regeneration in durum and bread wheat. Plant Cell, Tissue, Organ Culture, 77(3), 245-250.
    • Przetakiewicz, A., Orczyk, W., Nadolska-Orczyk A. (2003). The effect of auxin on plant regeneration of wheat, barley and Triticale. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 73(3), 245-256.
    • Salyaev, R.K., Dudareva, L.V., Lankevich, S.V., Sumtsova, V.M. (2001). The effect of low-intensity coherent radiation on the processes of morphogenesis in the wheat callus culture. Dokl. Akad. Nauk, 376, 830- 832.
    • Vasil, I.K. (2007). Molecular genetic improvement of cereals: transgenic wheat (Triticum aestivum L.). Plant Cell Rep, 26, 1133-1154.
    • Wang, X.M., Ren, X., Yin, G.X., Wang, K., Li, J.R., Du, L.P., Xu, H.J., Ye, X.G. (2013). Effects of environmental temperature on the regeneration frequency of the immature embryos of wheat (Triticum aestivum L.). Journal of Integrative Agriculture. Advanded Online Publication. DOI: 10.1016/S2095- 3119(13)60361-5.
    • Wang, C., Wei, Z. (2004). Embriogenesis and regeneration of green plantlets from wheat (Triticum aestivum L.) leafbase. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 77(2), 149-153.
    • Zhang, W., Wang, X., Fan, R., Yin, G., Wang, K., Du, L., Xiao, L., Yt, X. (2014) Effects of inter-culture, arabinogalactan proteins, and hydrogen peroxide on the plant regeneration of wheat immature embryos. Journal of Integrative Agriculture. Advanded Online Publication. DOI: 10.1016/S2095- 3119(14)60764-4.
  • No related research data.
  • No similar publications.

Share - Bookmark

Cite this article