Remember Me
Or use your Academic/Social account:


You have just completed your registration at OpenAire.

Before you can login to the site, you will need to activate your account. An e-mail will be sent to you with the proper instructions.


Please note that this site is currently undergoing Beta testing.
Any new content you create is not guaranteed to be present to the final version of the site upon release.

Thank you for your patience,
OpenAire Dev Team.

Close This Message


Verify Password:
Verify E-mail:
*All Fields Are Required.
Please Verify You Are Human:

OpenAIRE is about to release its new face with lots of new content and services.
During September, you may notice downtime in services, while some functionalities (e.g. user registration, login, validation, claiming) will be temporarily disabled.
We apologize for the inconvenience, please stay tuned!
For further information please contact helpdesk[at]openaire.eu

fbtwitterlinkedinvimeoflicker grey 14rssslideshare1
M. V. Skaptsov; D. L. Belkin; S. V. Smirnov; M. G. Kutsev (2015)
Publisher: Altay State University
Journal: Turczaninowia
Languages: English
Types: Article
Subjects: Botany, QK1-989

Было изучено влияние сомаклональной изменчивости в каллусной культуре и регенерантах девясила – Inula britannica L. Культивирование каллусов осуществляли на питательной среде в присутствии ауксинов и цитокининов на протяжении 12 месяцев, после чего стимулировали органогенез. Полиморфизм регенерантов и каллусов исследовали при помощи фрагментного анализа с применением RAF-маркеров. Степень геномных изменений исследовали с помощью проточной цитометрии. Анализ процентного соотношения полиморфных локусов показал увеличение генетического разнообразия на стадии каллуса, тогда как на стадии регенерации подобный полиморфизм восстанавливался до прежнего уровня. Изменения в размере генома регенерантов не наблюдались на первых месяцах культивирования, тогда как в некоторых случаях вариации генома регенерантов после 12 месяцев культивирования каллуса достигали 26 %. Более того, регенеранты со сроком субкультивации 12 месяцев формировали явные мутации в генеративных органах растений.

  • The results below are discovered through our pilot algorithms. Let us know how we are doing!

    • Biswas M. K., Dutt M., Roy U. K., Islam R., Hossain M. Development and evaluation of in vitro somaclonal variation in strawberry for improved horticultural traits // Sci Hortic-Amsterdam, 2009. - Vol. 122. - P. 409-416. DOI: 10.1016/j.scienta.2009.06.002.
    • Butenko R. G. Higher plant cell biology in vitro and biotechnology based on them: a tutorial. - Moskow: FBKPress, 1999. - 160 p. [In Russian]. (Бутенко Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе: учеб. пособие. - М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. - 160 с.).
    • Dang J. C., Kumaria S., Kumar S., Tandon P. Micropropagation of Ilex khasiana, a critically endangered and endemic holly of Northeast India // AoB Plants, 2011. - Vol. 2011. - plr012. DOI: 10.1093/aobpla/plr012.
    • Doležel J., Greilhuber J., Lucretti S., Meister A., Lysak M. A., Nardi L., Obermayer R. Plant genome size estimation by flow cytometry: inter-laboratory comparison // Ann. Bot., 1998. - Vol. 82. - P. 17-26.
    • Doyle J. J., Doyle J. L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue // Phytochem. Bull., 1987. - Vol. 19. - P. 11-15.
    • Ehsanpour A.A., Madani S., Hoseini M.В. Detection of somaclonal variation in potato callus induced by UV-C radiation using RAPD-PCR // Plant Physiol., 2007. - Vol. 33. - P. 3-11.
    • Encheva J., Tsvetkova F., Ivanov P. A. comparison between somaclonal variation and induced mutagenesis in tissue culture of sunflower line Z-8-A ( Helianthus annuus L.) // Helia, 2003. - Vol. 26. - P. 91-98.
    • Ghorbanpoura M., Khadivi-Khub A. Somaclonal variation in callus samples of Plantago major using inter-simple sequence repeat marker // Caryologia, 2015. - Vol. 68. - No. 1. - P. 19-24. DOI: 10.1080/00087114.2014.998128.
    • Kumar A., Bennetzen J. L. Plant retrotransposons // Annu Rev Genet, 1999. - Vol. 33. - P. 479-532.
    • Kutsev M. G. Fragmentnyy analiz DNK rasteniy: RAPD, DAF, ISSR. - Barnaul: Artika, 2009. - 163 p. [In Russian]. (Куцев М.Г. Фрагментный анализ ДНК растений: RAPD, DAF, ISSR. - Барнаул: Артика, 2009. - 163 с.).
    • Kutsev M. G., Skaptsov M. V., Kholodkova М. А., Ivanova M. S., Smirnov S. V., Sinitsyna T. A., Friesen N. V. Using randomly amplified DNA fingerprinting (RAF) for genotyping common and durum wheats varieties (Triticum durum and T. aestivum) // Turczaninowia, 2013. - Vol. 16, No. 3. - P. 157-159 [In Russian]. (Куцев М. Г., Скап- цов М. В., Холодкова М. А., Иванова М. С., Смирнов С. В., Синицына Т. А., Фризен Н. В. Использование RAF-анализа для генотипирования сортов мягкой и твердой пшениц // Turczaninowia, 2013. - Т. 16, № 3. - С. 157-159). DOI: http:/dx.doi.org/10.14258/turczaninowia.16.3.21.
    • Larkin P., Scowcroft W. Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theor. Appl. Genet., 1981. - Vol. 60. - P. 197-214.
    • Li R., Bruneau A. H., Qu R. Tissue culture-induced morphological somaclonal variation in St. Augustinegrass [Stenotaphrum secundatum (Walt.) Kuntze] // Plant Breeding, 2010. - Vol. 129. - P. 96-99. DOI:10.1111/j.1439- 0523.2009.01647.x.
    • Marie D., Brown S. C. A cytometric exercise in plant DNA histograms, with 2C values for 70 species // Biol. Cell, 1993. - Vol. 78. - P. 41-51.
    • Mgbeze G. C., Iserhienrhien A. Somaclonal variation associated with oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) clonal propagation: A review // Afr. J. Biotechnol., 2014. - Vol. 13, No. 9. - P. 989-997. DOI: 10.5897/AJBX12.011.
    • Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Plant. Physiol., 1962. - Vol. 15, No. 13. - P. 473-497.
    • Muthusamy A., Jayabalan N. Radiation and chemical mutagen induced somaclonal variations through in vitro organogenesis of cotton (Gossypium hirsutum L.) // Int. J. Radiat. Biol., 2014. - Vol. 90, No. 12. - P. 1229-1239. DOI: 10.3109/09553002.2014.923589.
    • Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals // Genetics, 1978. - Vol. 89. - P. 583-590.
    • Otto F. DAPI staining of fixed cells for high-resolution flow cytometry of nuclear DNA // Method Cell, 1990. - Vol. 33. - P. 105-110.
    • Peakall R., Smouse P. E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research an update // Bioinformatics, 2012. - Vol. 28. - P. 2537-2539. DOI: 10.1093/bioinformatics/bts460.
    • Pfosser M., Amon A., Lelley T., Heberle-Bors E. Evaluation of sensitivity of flow cytometry in detecting aneu - ploidy in wheat using disomic and ditelosomic wheat-rye addition lines // Cytometry, 1995. - Vol. 21, No. 4. - P. 387-393. DOI: 10.1002/cyto.990210412.
    • Sarasan V., Cripps R., Ramsay M., Atherton C., McMichen M., Prendergast G., Rowntree J. K. Conservation in vitro of threatened plants-progress in the past decade // In Vitro Cell Dev-Pl, 2006. - Vol. 42, No. 3. - P. 206-214. DOI: 10.1079/IVP2006769.
    • Sivanesan I., Lim Y. M., Jeong B. R. Micropropagation and greenhouse cultivation of Scrophularia takesimensis Nakai, a rare endemic medicinal plant // Pak. J. Bot., 2012. - Vol. 44, No. 5. - P. 1657-1662.
    • Skaptsov M. V., Kutsev M. G. Effect of 24-epibrassinolide on duration of sorrel (Rumex acetosa L.) cultivation in vitro // TSU J. Biol., 2013. - Vol. 22, No. 2. - P. 52-56 [In Russian]. (Скапцов М. В., Куцев М. Г. Влияние 24-эпи- брассинолида на продолжительность культивирования щавеля (Rumex acetosa L.) in vitro // Вестник Томского гос. ун-та. Биология, 2013. - Т. 22, № 2. - С. 52-56).
    • Skaptsov M. V., Smirnov S. V., Kutsev M. G. Nuclear DNA content in some plant kinds used as an external standard in flow cytometry // Turczaninowia, 2014. - Vol. 17, No. 3. - P. 72-78 [In Russian]. (Скапцов М. В., Смирнов С. В., Куцев М. Г. Содержание ядерной ДНК в некоторых сортах растений, используемых в качестве внешних стандартов в проточной цитометрии // Turczaninowia, 2014. - Т. 17, № 3. - С. 72-78). DOI: 10.14258/turczaninowia.17.3.8.
    • Sun S., Zhong J., Li S., Wang X. Tissue culture-induced somaclonal variation of decreased pollen viability in torenia (Torenia fournieri Lind.) // Botanical Studies, 2013. - Vol. 54, No. 36. - P. 1-7. DOI:10.1186/1999-3110-54-36.
    • Tanaka R. On the speciation of karyotype in diploid and tetraploid species of Chrysanthemum boreale (2n = 18) // Journal of Science of Hiroshima University Series B, Division 2, 1959. - Vol. 9. - P. 1-16.
    • Waldron J., Peace C. P., Searle I. R., Furtado A., Wade N., Findlay I., Gaham M. W, Carroll B. J. Randomly Amplified DNA Fingerprinting: a culmination of DNA marker technologies based on arbitrarily-primed PCR amplifi - cation // J. Biomed. Biotechnol., 2002. - Vol. 3. - P. 141-150. DOI: 10.1155/S1110724302206026.
  • No related research data.
  • No similar publications.

Share - Bookmark

Cite this article

Cookies make it easier for us to provide you with our services. With the usage of our services you permit us to use cookies.
More information Ok